Главная / Франшиза магазинов

Анализ пиф на хламидии. Диагностика хламидиоза

32 798

Как известно, всякая болезнь имеет свои, присущие только ей, признаки. Но это не имеет никакого отношения к хламидиозу.
Хламидиоз – это болезнь, которая не имеет чётких симптомов, присущих только ей, а иногда и вовсе протекает бессимптомно. И даже если какие-то проявляются, то чаще всего они схожи с признаками других ЗППП.
Поэтому для постановки диагноза решающими являются лабораторные методы исследования. В отличие от многих других заболеваний диагноз хламидиоз – чисто лабораторный.

Кто, прежде всего, должен обследоваться на хламидиоз?

Мужчины и женщины, имеющие много половых партнеров, особенно случайных.
Лица, у половых партнёров которых обнаружен хламидиоз, даже при отсутствии жалоб и симптомов. Ведь осложнения хламидиоза могут развиваться даже при его бессимптомном течении. Риск заражения партнера составляет около 90%.
Женщины, страдающие бесплодием более 2 лет, даже в том случае, если половой партнёр обследован и здоров.
Женщины с эрозиями шейки матки, цервицитами, воспалением яичников (особенно при планировании беременности). Причем влагалищный мазок при этом может быть нормальный.
Женщины с нарушением протекания беременности: самопроизвольные выкидыши, преждевременные роды, многоводие, повышение температуры неясного происхождения во время настоящей беременности.

Что исследуют?
Для обнаружения хламидий необходимо произвести забор материала. Это может быть соскоб, содержащий клетки больного органа — влагалища, шейки матки, секрет простаты, соскоб из уретры, конъюнктивы глаза. Таким материалом также может быть кровь, моча и сперма у мужчин.

Какие анализы назначают при хламидиозе и насколько они могут быть полезны?
Сначала мы остановимся на возможных методах обследования, а затем сделаем вывод, какие из них наиболее предпочтительны.

2. Иммуноцитологический анализ — Реакция прямой иммунофлюоресценции (РИФ или ПИФ).
Этот метод предусматривает прямое выявление антигенов хламидий. Для этого материал, полученный при соскобе, обрабатывают специальными антителами, которые непосредственно обработаны флуоресцирующим веществом. Эти антитела связываются со специфическими антигенами хламидий. Затем при люминесцентной микроскопии хламидийные включения в клетках определяют по зелёному или желто-зеленому свечению.
Иммуноцитологический метод используется как при острой, так и при хронической фазе заболевания.
Существенным недостатком РИФ является большое количество ложноотрицательных и ложноположительных результатов. Ложноотрицательные результаты чаще всего связаны с нарушением правил забора биологического материала. Ложноположительные результаты могут быть следствием сочетанных инфекций урогенитального тракта, когда вместе с хламидией присутствует другая микробная флора. Кроме всего прочего, РИФ носит очень субъективный характер, т.к. зависит от опыта и личной оценки лаборанта. Поэтому РИФ дает очень высокий процент ложноположительных результатов и не может считаться достоверным. Недостатком РИФ также является то, что с её помощью нельзя оценить результаты лечения.
При урогенитальном хламидиозе точность метода составляет около 50%.

3. Иммуноферментный анализ (ИФА).
ИФА является методом непрямого выявления бактерий, т.е. возбудитель не обнаруживается непосредственно, а определяются специфические антитела (IgG, IgA, IgM) к нему. В основе метода лежит способность иммунной системы вырабатывать антитела (иммуноглобулины , Ig ) в ответ на внедрение чужеродных агентов.
Преимущества ИФА заключаются в том, что он позволяет не только выявить возбудителя заболевания, но также определить на какой стадии оно находится (острой или хронической) и оценить эффективность проведенного лечения. Преимуществом также является автоматизация метода и быстрота его проведения.

Как оценивают результаты?
При инфицировании хламидиями специфические антитела появляются на 5-20-й день заболевания. При этом появление каждого класса антител происходит на определённой стадии заболевания.

При первичном инфицировании сначала появляются IgМ, затем – IgA, и в последнюю очередь – IgG.
Самыми первыми после первичного инфицирования (через 5 дней) появляются IgM, которые защищают организм от возможного распространения инфекции. Они являются маркерами острой стадии заболевания. К 10-му дню количество IgM в крови достигает пика. Затем их уровень начинает снижаться, и появляются IgA. В течение небольшого периода времени могут обнаруживаться параллельно IgM и IgA антитела . Этот период свидетельствует о разгаре инфекционного процесса.
IgA можно обнаружить через 10 дней от момента появления первичных симптомов заболевания. Они защищают слизистые оболочки от проникновения бактерий глубоко в ткани. Высокий уровень IgA в выделениях слизистых оболочек говорит о хорошо функционирующем местном иммунитете.
Затем, через 15 — 20 дней после внедрения в организм Chlamydia trachomatis в крови появляются IgG, а уровень IgA снижается.
Острый первичный процесс характеризуется высоким уровнем (титром) IgM в сочетании с низким титром IgG.
При повторном заражении отмечается быстрое нарастание титра IgG и IgА и практически полное отсутствие IgM.
При хроническом течении выявляются специфические IgG и А, концентрации которых не изменяются на протяжении длительного времени.
При излечении через 1,5-2 месяца IgA и IgM в крови не обнаруживаются, а IgG могут сохраняться в течение нескольких лет, однако их уровень снижается в 4-6 раз.
Длительно обнаруживаемые IgG указывают на перенесённую хламидийную инфекцию.
При обострении хламидиоза количество IgA и IgG увеличивается в несколько раз.
Эффективность проведенного лечения определяется по наличию IgA. Если через 2 месяца после курса лечения в крови обнаруживаются IgA — это означает, что инфекция осталась.

Необходимо отметить, что специфические антитела , вырабатываемые к хламидиям, не обеспечивают стойкого иммунитета против них.
Точность этого анализа на хламидиоз составляет около 70 %. Это связано с тем, что антитела к хламидиям могут присутствовать и у здоровых людей вследствие ранее перенесенного заболевания, а также определяться при респираторных и других видах хламидийных инфекций.

4. Полимеразная цепная реакция (ПЦР).
С помощью ПЦР выявляется специфический участок или фрагмент ДНК хламидий в исследуемом материале, поэтому в сравнении с другими методами спутать хламидии с какой-то другой инфекцией невозможно. Он эффективен как в острой, так и в хронической фазе заболевания. При этом для анализа нужно совсем немного материала, результаты же готовы уже через 1-2 дня.
Для ПЦР исследования материалом может быть соскоб из уретры или цервикального канала, секрет предстательной железы, осадок мочи, соскоб с конъюнктивы глаз, кровь.
При диагностике первичного заражения более информативным является выявление данной инфекции в местах изначальной локализации, т.е. материалом должны быть соскобы из половых путей. Ложноположительные результаты ПЦР могут быть в случае нарушения процесса забора, транспортировки материала и проведения самого анализа.

Важно! Для оценки эффективности лечения ПЦР исследование нельзя проводить ранее чем через месяц после курса антибиотикотерапии, т.к. можно получить ложноположительные результаты. Это связано с тем, что при выявлении фрагмента ДНК хламидии невозможно оценить, насколько жизнеспособна сама микробная клетка. В этом случае жизнеспособность хламидий, а также связанная с ней возможность рецидивов болезни оценивается с помощью микробиологического метода. Если хламидия нежизнеспособна, то, несмотря на наличие фрагмента ДНК, микробные клетки не будут расти в клеточной культуре.
На сегодняшний день точность этого методы является самой высокой — до 100 %.
Данный метод рекомендован как предпочтительный в диагностике хламидийной инфекции.

5. Микробиологическое исследование (культуральный метод) с определением чувствительности к антибиотикам.
Суть этого метода состоит в том, что исследуемый материал высевается на специальную среду и выращивается. Затем по характеру роста и другим признакам идентифицируется возбудитель. Культуральный метод является наиболее чувствительным, он позволяет не только выявить жизнеспособные хламидии, но и подобрать антибиотик, к которому чувствителен данный микроорганизм.
Материалом для исследований может служить соскоб из уретры, шейки матки, секрет простаты, соскоб с конъюнктивы глаза.
За месяц до исследования нельзя применять антибиотики.
Микробиологическое исследование предпочтительнее проводить в следующих случаях:

Для оценки эффективности проведенного антибактериального лечения.
Для выявления чувствительности к антибактериальным препаратам.
Для выявления хламидий у лиц с иммунодефицитами (ВИЧ инфицированные, онкологические больные после лучевой и химиотерапии, лица, получающие иммунодепрессанты, др.).

Недостатками культурального метода диагностики хламидиоза являются трудоемкость, дороговизна и длительность исследования. Также необходимо особое оснащение лаборатории и очень высокая квалификация персонала. Кроме того, данный метод, как никакой другой, требует безукоризненного соблюдения правил при заборе материала, транспортировке и хранении.
Реальный срок получения результатов этим методом – не менее семи дней.
Выявляемость хламидий при посеве составляет до 90 %.

6. Экспресс-диагностика.
В основе всех методов экспресс-диагностики хламидиоза лежит ферментспецифическая реакция и иммунохроматография. Для этого используются специальные наборы для экспресс-диагностики, которые позволяют визуально оценивать результаты уже через 10-15 минут. Это очень быстрый и удобный метод, но его точность составляет всего 20-25 %.

Выводы.

Не существует ни одного метода, который бы в 100% случаев выявлял хламидии. Поэтому в большей части случаев лабораторная диагностика должна включать в себя сочетание не менее двух методов.
Самые чувствительные анализы на хламидиоз — ПЦР (ДНК — диагностика) и микробиологический анализ. Они являются «юридическим стандартом» при диагностике хламидиоза.
В случае первичного заражения до применения антибиотиков чаще всего достаточно одного ПЦР исследования.
При хронических процессах — ПЦР или микробиологический тест, или РИФ+ИФА.
При вероятности перехода возбудителя в L-форму – ИФА.
Для оценки эффективности лечения в идеале используется микробиологическое исследование. При невозможности его проведения – ПЦР + ИФА.
Для определения стадии болезни – ИФА.
У больных с иммунодефицитами ИФА не информативен, в идеале использовать микробиологический метод.
Не стоит особо полагаться на результаты по определению чувствительности хламидий к антибиотикам. Ведь, как известно, микроорганизмы ведут себя по-разному в пробирке (in vitro) и в живом организме(in vivo).

Изучение достоверности результатов лабораторных исследований методами ПИФ и ПЦР при диагностике урогенитальной хламидийной инфекции

Кисина Г. А.
Организация: ФГУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора; ММА им.

Ведение . Урогенитальная хламидийная инфекция (УГХИ) вызываемая Chlamydia trachomatis является наиболее частой ИППП и протекает у мужчин обычно в форме уретрита, а у женщин в форме гнойно-серозного цервицита. Диагностика УХИ базируется на методах лабораторного исследования, поскольку клинические проявления носят неспецифический характер, и в значительном числе случаев инфекция протекает скрыто в субклинической форме, манифестируя уже на стадии развития осложнений.

Наиболее эффективными методами диагностики УГХИ в настоящее время во всем мире считаются методы амплификации нуклеиновых кислот (МАНК), которые обладают высокой чувствительностью, специфичностью и возможностью автоматизации, благодаря чему возрастает объективность оценки результатов исследования и возможность анализа большого количества клинических образцов. В нашей стране среди МАНК наибольшее распространение получил метод ПЦР, на основе которого несколькими производителями выпускаются коммерческие тест-системы. Кроме того, впервые в зарубежной и отечественной практике в ФГУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора была разработана и прошла Государственную регистрацию тест-система на основе реакции транскрипционной амплификации НАСБА с детекцией в реальном времени (Рег. удост. № ФС 012б2006/5664-06 от 01.01.01г). Однако, наряду с МАНК по-прежнему, особенно в Российской Федерации, широко применяется метод прямой иммунофлуоресценции (ПИФ), который относительно прост в исполнении и не требует специального дорогостоящего оборудования. Недостатком метода является невысокая диагностическая чувствительность и специфичность, которые в значительной степени зависят от качества получения клинического материала и опыта лабораторного персонала.

На сегодняшний день вместо регламентированного алгоритма лабораторного обследования при диагностике УГХИ предлагается перечень существующих методов с указанием их диагностических характеристик [, 2003; , 2006; Дерматовенерология 2007 Клинические рекомендации]. В связи с этим некоторые отечественные руководства [, 2007] рекомендуют для увеличения достоверности результатов лабораторного исследования на УГХИ использовать одновременно два метода, не учитывая, что методы, различающиеся по аналитическим характеристикам, могут приводить к несовпадающим результатам и только увеличивать трудности окончательного диагноза.

Целью проведенного исследования стало изучение объективности результатов при диагностике УГХИ с использованием методов ПЦР и ПИФ.

Материалы и методы . Материалом для исследования служили соскобы из уретры от 132 мужчин, проходивших клинико-лабораторное обследование на базе ММА им. . От каждого пациента было получено не менее двух образцов, один из которых наносился на предметное стекло для дальнейшего исследования методом ПИФ, а другой образец помещался в транспортную среду для последующего исследования МАНК. Для диагностики методом ПИФ использовали коммерческую тест-систему «ХлаМоноСкрин» (ПЛЮС», Россия). Для выявления ДНК C. trachomatis использовали тест-систему «Амплисенс Chlamydia trachomatis – FRT» на основе ПЦР «в реальном времени», а для выявления РНК C. trachomatis тест-систему на основе НАСБА «в реальном времени». Реакции амплификации ПЦР и НАСБА с детекцией флуоресцентного сигнала в реальном времени проводили в приборах RotorGene 6000 (Corbett Research, Австралия)

Результаты . Положительные результаты выявления C. trachomatis методом ПИФ были получены у 44 пациентов, а методом ПЦР – у 32 пациентов. Однако совпадение результатов ПИФ и ПЦР было только в 8 случаях. Таблица 1.

Таблица1

Результаты исследования	Количество пациентов (n=132)
Положительный результат	Отрицательный результат	Неопределенный результат
Только ПЦР
Только ПИФ
Совпадение результатов ПЦР + ПИФ

Для подтверждения результатов исследования методом ПИФ 30 стекол после исследования одним специалистом были повторно исследованы другим независимым специалистом. Для подтверждения результатов ПЦР соответствующие клинические образцы были повторно разморожены и исследованы на наличие РНК C. trachomatis методом НАСБА. Результаты представлены в Таблице 2.

Таблица 2.

НАСБА	ПЦР	ПИФ 1	ПИФ 2
		сомн.
		сомн.	сомн.




		сомн.
		сомн.
		сомн.

			сомн.
		сомн.


			сомн.


		сомн.

			сомн.





		сомн.
		сомн.
		сомн.
		сомн.

«- » - обнаружено, «+» - не обнаружено, «сомн.» - результат сомнительный

Как видно из таблицы, результаты обоих МАНК совпали в 100% случаях, в то время как при использовании метода ПИФ результаты полученные первым специалистом (ПИФ1) в значительном числе случаев были интерпретированы иначе вторым специалистом (ПИФ2). Несмотря на то, что в 4-х случаях положительные результаты ПИФ, отмеченные обоими специалистами, не подтвердились результатами МАНК, данные совпадения из-за общего большого числа расхождений в оценках результатов ПИФ выглядят скорее случайными. Нельзя исключить, что в ряде случаев несовпадение результатов методов ПЦР и ПИФ есть следствие ошибок при получении клинического материала для исследования вторым методом, однако гораздо важнее то, что полученная в процессе исследования методом ПИФ цитологическая картина интерпретируется по-разному разными специалистами.

Субъективность метода ПИФ отмечена давно. В 1986 г. Коллегия Патологов Америки инициировала комплексную оценку использования метода ПИФ для диагностики хламидийной инфекции проводимой разными лабораториями США. В отчетном докладе по результатам за гг. указывается на значительные расхождения в выполнении процедуры фиксации, учета количества элементарных частиц, необходимых для положительного заключения о наличии инфекции, используемых в работе антител . Снижение порога значимости ниже 10 флуоресцирующих включений в поле зрения приводило к снижению специфичности теста. Авторы отчета подчеркивают, что в значительной степени результаты зависели от подготовленности, опыта и от длительности работы лабораторного персонала.

Заключение. Полученные данные позволяют рассматривать первично полученные результаты методом ПЦР как достоверные и отражающие наличие хламидий в исследуемых образцах. Комбинация двух методов ПЦР и НАСБА является наиболее адекватным подходом для верификации диагноза УГХИ. Использование метода ПИФ ввиду высокой субъективности и низкой аналитической чувствительности приводит к высокому числу как ложно-отрицательных, так и ложно-положительных результатов, что в одном случае не позволяет своевременно диагностировать инфекцию и проводить этиотропную терапию, а в другом случае приводит к необоснованному диагнозу и назначению неоправданного лечения.

Эти методы основаны на обнаружении антигенных субстанций хламидий в эпителии и других тканях путем обработки препаратов специфическими антителами. Антитела диагностической антихламидийной сыворотки соединены с какой-либо меткой -- люминесцирующей (ФИТЦ-антитела) или ферментной (энзим-меченые антитела).

Прямая иммунофлюоресценция (ПИФ)

Этот метод предусматривает прямое выявление антигенов хламидий. При люминесцентной микроскопии включения хламидий определяются в виде зеленой или желто-зеленой флюоресценции включений на коричнево-оранжевом фоне цитоплазмы клеток. Включения могут иметь зернистую гомогенную или смешанную структуру.

Показания:

Острая фаза заболевания.
Хроническая фаза заболевания.
Установление этиологии хронического инфекционного процесса урогенитального тракта.
Беременность с отягощенным акушерским анамнезом.
Бесплодие неясного генеза.

Диагностическая информативность ПИФ связана с тем, что с ее помощью выявляются не только корпускулярные, но и растворимые антигены хламидий. Этот метод не зависит от возможного изменения тинкториальных свойств микроорганизма в процессе заболевания и лечения.

ПИФ-метод является важнейшим скриннинговым методом диагностики урогенитального хламидиоза.

Его чувствительность и специфичность при использовании моноклональных антител составляет соответственно 65-90% и 85-90%.

При оценке результатов следует учитывать, что только показатели внутриклеточной флюоресценции могут оцениваться в качестве положительного результата этого теста при использовании поликлональных антихламидийных антител, при использовании моноклональных -- результат считают при наличии 10 ЭТ в пользе зрения.

Cоскобные препараты готовят также, как и для цитоскопических исследований.

Методика:

Выпускают диагностические наборы, содержащие моноклональные антитела для ПИФ, следующие фирмы: Syva, Difco, Kallastad, Bartrels, Boots celltech, California Integrated Diagnostics, Orion Diagnostica. Реагенты фирм Syva, Difco, Kallastad представляют собой меченные ФИТЦ моноклональные антитела к основному белку наружной мембраны хламидий, а реагенты других фирм -- моноклональные антитела к родоспецифическому хламидийному липолисахариду (ЛПС). В России ЗАО “НИАРМЕДИК плюс” при НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи РАМН выпускает моноклональные антитела к ЛПС хламидий, которые успешно конкурируют с продукцией иностранных фирм по качеству продукции. Это набор “Хламоноскрин” для определения моноклональных антител к родоспецифическому липополисахаридному антигену и набор “Хламоноскрин-2” для определения моноклональных антител к видоспецифическому белковому антигену хламидии трахоматис. Наборы имеют ФС 42-359598 и регистрационное удостоверение Минздрава России 93/270/9.

Моноклональные антитела отличаются друг от друга по вызываемой яркости свечения, постоянству выявляемых форм ЭТ и степени специфичности. Для диагностики хламидий этим методом необходим люминесцентный микроскоп.

Применение:

В целом, метод ПИФ отвечает критериям высокой чувствительности и специфичности, но требует исполнения опытным, компетентным лабораторным работником.

Высококвалифицированная экспертная оценка методом ПИФ редко бывает доступной, поэтому средняя чувствительность его снижается. Метод недостаточно чувствителен и для стабильного определения малых количеств ЭТ. К тому же невозможно проверить и отрицательные результаты, и, следовательно, обнаружить среди них ложноотрицательные, что приводит к снижению чувствительности.

Непрямой метод иммунофлюресценциии

Непрямой метод иммунофлюресценции применяют в тех случаях, когда нет в наличии ФИТЦ-конъюгата антихламидийных антител. В этих случаях приготовленный тем же методом, что и для ПИФ препарат из клинических проб обрабатывают вначале антихламидийными антителами, полученными путем иммунизации хламидиями овец, кроликов, мышей или других животных, а затем второй сывороткой, специфичной для вида животного, которое было иммунизировано хламидиями. Антитела второй сыворотки конъюгированы с ФИТЦ. Показания к применению и специфичность данного метода совпадают с ПИФ.

Метод прямой иммунофлюоресценции представляет собой способ непосредственного выявления антигенов хламидий. Люминесцентная микроскопия определяет хламидийные включения как образования в клетках эпителия с желто-зеленой, либо зеленой флюоресценцией на фоне коричнево-оранжевой цитоплазмы клеток. Включения имеют гомогенную, зернистую, либо смешанную структуру.

Прямая иммунофлюоресценция применяется в случаях: острой фазы заболевания; хронической фазы заболевания; установления этиологии инфекционных хронических процессов урогенитального тракта; беременности, отягощенной акушерским анамнезом; бесплодия неопределенного генеза.

Рис. 1. Прямая иммунофлюоресценция. Прямой метод предполагает использование помеченных флюоресцирующим красителем AT к интересующему Аг; AT взаимодействуют с Аг в местах их локализации, что и позволяет визуализировать метка.

Информативная способность прямой иммунофлюоресценции заключается в выявлении не только корпускулярных, но и растворимых антигенов хламидий. Данный метод работает вне зависимости от вероятных изменений тинкториальных особенностей микроорганизмов при заболевании и при лечении . Метод прямой иммунофлюоресценции является основным скрининговым методом диагностирования урогенитального хламидиоза. Его специфичность и чувствительность составляет 65-90% или 85-90% в случаях применения моноклональных антител. Оценивая результаты, следует иметь в виду, что в качестве положительных итогов теста оценивается исключительно показатель флюоресценции внутриклеточных включений, если использовались поликлональные антихламидийные антитела.

В случае использования моноклональных антител результаты считаются положительными, если в поле зрения присутствуют 10 ЭТ (элементарных телец), либо хотя бы одно внутриклеточное включение. Подготовка соскобных препаратов такая же, как и при цитоскопических исследованиях. Моноклональные антитела можно отличить одно от другого по неизменности обнаруживаемых форм ЭТ, яркости флюоресценции и уровню специфичности. При диагностировании описанным методом хламидий используют люминесцентный микроскоп.

Специалисты сходятся во мнении, что метод прямой иммунофлюоресценции отвечает требованиям высокой специфичности и чувствительности, однако при этом серьезно возрастают критерии компетенции лабораторных работников. Достаточно высокий уровень экспертной оценки методом прямой иммунофлюоресценции доступным бывает далеко не всегда, отчего усредненный показатель его чувствительности недостаточно высок. В случаях определения малого количества ЭТ метод не гарантирует необходимой чувствительности, что приводит иногда к ложноотрицательным результатам.

К непрямому методу иммунофлюоресценции прибегают в случаях, когда отсутствует ФИТЦ-конъюгат антихламидийных антител. В таких ситуациях подготовленный из клинических проб тем же способом, что и для прямой иммунофлюоресценции, препарат сначала обрабатывают антихламидийными антителами, которые получают методом иммунизации хламидиями кроликов, мышей, овец, либо других животных а потом - специфичной для данного, иммунизированного хламидиями, животного второй сывороткой. Антитела последней сыворотки являются конъюгированными с ФИТЦ. Специфичность и показания к использованию описанного метода сопоставимы с методом прямой иммунофлюоресценции.

Говоря о методах иммуноферментного анализа , следует отметить, что основаны они на выявлении растворимого антигена хламидии в предоставленных на исследование пробах. В клинической практике используются, преимущественно, наборы реагентов, образованные методом твердофазных ИФА-анализов для установления антигенов хламидий. Амплификации достигают, используя методы полимерной конъюгации, следствием чего является фиксация, когда для каждого связанного участка антигена определяется полимерная группа с высокомолекулярной составляющей.

Вследствие применения метода фермент-амплификации положительная проба приобретает желто-оранжевую окраску, интенсивность которой пропорциональна численности антигена хламидии. Точные результаты исследования определяются при помощи вычислительной техники.

Информативные и достоверные результаты в диагностике хламидиоза дают лабораторные анализы. В МЖЦ вы можете сделать анализ крови на хламидии lgA + lgG. Цена услуги – 700 рублей.

Цены на диагностику хламидиоза*

Методы диагностики хламидиоза

Диагностировать хламидиоз по симптомам достаточно сложно, поэтому заболевание чаще всего обнаруживается в процессе обследования на другие половые инфекции и гинекологические болезни. Получение достоверных результатов возможно только на основе комплексной лабораторной диагностики. Материалом для исследования служит венозная кровь, мазок из влагалища, шейки матки, соскоб.

Основные методы:

мазок;
бакпосев.

Иммуноферментный анализ крови (ИФА) позволяет определить стадию хламидиоза по наличию антител Igg, Igm, Iga. На начальном этапе заболевания в крови появляются антитела Igm. Если хламидиоз прогрессирует, то подтвердят наличие антител Iga. В хронической форме в крови присутствуют компоненты Igg.

В ходе анализа полимеразной цепной реакции (ПЦР) обнаруживается ДНК возбудителя. Это достоверное исследование, которое информативно даже в тех случаях, когда заболевание протекает в скрытой форме.

Специалисты

Когда и как сдавать анализы на хламидии

Назначение и отбор материалов для анализа делает врач. Поводом для проведения лабораторной диагностики могут стать жалобы на боли в области малого таза, выделения, сведения об инфицировании партнёра и незащищённом сексе.

При длительном бесплодии и самопроизвольном прерывании беременности женщине рекомендуется в первую очередь подтвердить или исключить инфицирование Chlamidiya trachomatis.

за неделю прекратить использование местных лекарственных средств (вагинальных свечей, таблеток);
за три дня отказаться от использования средств интимной гигиены;
за два дня прекратить половые связи.

Чтобы обеспечить достоверность материала, накануне обследования не нужно спринцеваться и подмываться.

Кровь для анализа берётся утром натощак. Мазок – на день после окончания менструации.

Максимально достоверный результат может быть получен только после проведения нескольких анализов. В отдельных случаях исследования проводятся повторно, и только после этого устанавливается диагноз.

Расшифровка анализа на хламидии

ПЦР-диагностика хламидиоза расшифровывается по двум значениям: положительно или отрицательно. Более подробные сведения даёт ИФА-анализ – по количеству антител определённого вида можно судить о прогрессировании инфекционного процесса ил выздоровлении.

При определении стадии хламидиоза доктор пользуется стандартными количественными сетками – титрами. Например, при хронической форме заболевания результаты анализа находятся в границах таких показателей:

IgA до 50;
IgG 100-1600;
IgM 50-200.

Об улучшении ситуации говорят цифры:

IgA до 50;
IgG 100-400;
IgM до 50.

Где сдать анализы на хламидиоз в Москве

Для получения точных результатов исследования на хламидии должны проводиться в специальных условиях, компетентными диагностами. МЖЦ оснащён собственной лабораторией, где обследование и расшифровку выполняют квалифицированными врачами.

Чтобы записаться на лабораторную диагностику, достаточно связаться с нами по телефону или заполнить форму обратной связи.